Programma

Cenni di immunobiologia comparata. Immunità innata e specifica: un confronto. Principali tappe nell’evoluzione dell’immunità. Saggi immunologici d’interesse per la bio-diagnostica. Anticorpi derivati da specie animali (monoclonali, lambodies, nanobodies) e loro utilizzo in campo bio-medico. Biofarmaci ottenuti da adattamenti delle specie animali e loro utilizzo in campo bio-medico, casi di studio: peptidi antimicrobici come nuovi antibiotici, farmaci antitumorali, silicateine. Discussione di lavori scientifici riguardanti le tematiche e gli approcci metodologici affrontati durante il corso. Cenni sui progetti europei nel campo delle biotecnologie animali.

Testi consigliati

Il docente fornirà delle dispense durante lo svolgimento del corso.

Propedeuticità

Nessuna

Frequenza

Facoltativa

Metodologia didattica

Ore lezione: 24

Descrizione dei metodi di accertamento

E’ previsto un project work: gli studenti possono preparare, se vogliono, una presentazione, mediante un file ppt, di un lavoro scientifico da loro scelto su un argomento trattato durante il corso.
Il giudizio, e di conseguenza il voto finale, terrà conto delle conoscenze e dei concetti acquisiti, della capacità di analisi dei problemi, di collegare conoscenze interdisciplinari, di formulare ipotesi e di giudizi, della padronanza e della chiarezza di espressione ed esposizione. Al candidato saranno, inoltre, poste almeno tre domande che spazieranno su tutto il programma, ognuna delle quali sarà valutata con un punteggio diverso a seconda della sua complessità.
Il candidato dovrà dimostrare aver acquisito conoscenze sui saggi diagnostici e sull'utilizzo in ambito bio-medico delle sostanze identificate in specie animali.

Luogo lezioni

Ex Facoltà di Agraria
via San Camillo de Lellis snc
Viterbo

Comunicazioni

Martedì e Mercoledì dalle ore 11.00 alle 13.00 nell'Ufficio del Docente, stanza 308, II piano del Blocco D.

Programma

Programma del corso
Microscopia ottica: principi di funzionamento ed applicazioni. Le tecniche cito-istologiche come metodo diagnostico; tecniche di prelievo, fissazione, inclusione e colorazione di campioni. Metodi di indagine istochimica. Microscopia ottica a super-risoluzione: principi ed applicazioni. La microscopia ottica a microdissezione laser e sue applicazioni. La microiniezione: presentazione e discussione di casi studio.
Tecniche di immunoistochimica ed immunofluorescenza su cellule e tessuti; tecniche di preparazione dei campioni; possibili applicazioni in ambito biologico e in particolare nella ricerca biomedica di base ed applicata. Gli anticorpi e le immunolocalizzazioni. Fluorescenza e fluorocromi. Le proteine fluorescenti. Il microscopio a fluorescenza e il microscopio a scansione laser confocale; principi di preservazione dei campioni per la microscopia confocale. Procedure per l’ibridazione in situ su cellule e sezioni di tessuti; ibridazione di acidi nucleici: principi ed applicazioni. La microscopia elettronica: principi di funzionamento ed applicazioni. Il microscopio elettronico a trasmissione e a scansione: tecniche di preparazione dei campioni. L’immunogold labelling e sue applicazioni in ambito biomedico. Microanalisi elementare del campione: determinazione della presenza e dell'accumulo di sostanze tossiche all'interno di campioni biologici; presentazione e discussione di casi studio. Il microscopio elettronico a scansione ambientale principi ed applicazioni. Immunogold in microscopia elettronica a scansione ambientale: caratteristiche applicative. Metodi quantitativi di elaborazione dell’immagine. Discussione di lavori scientifici in lingua inglese riguardanti le tematiche e gli approcci metodologici affrontati durante il corso.
Descrizione sintetica delle attività di esercitazione
Allestimento di vetrini istologici: fissazione, inclusione, taglio al microtomo, colorazione di campioni ed osservazione al microscopio ottico. Reazioni di immunolocalizzazione: la reazione ABC immunoperossidasi intensificata con nickel. Preparazione di campioni per la microscopia a fluorescenza: osservazione di campioni al microscopio a fluorescenza e al microscopio a scansione laser confocale. Preparazione di campioni per la microscopia elettronica a trasmissione: fissazione, inclusione, taglio all’ultramicrotomo, contrasto positivo e negativo, ed osservazione al TEM dei campioni. Reazioni di immunolocalizzazione per la microscopia elettronica: preparazione ed osservazione di campioni. Il microscopio elettronico a scansione: preparazione di campioni ed osservazione. Microanalisi elementare del campione: preparazione ed osservazione di campioni in laboratorio. Le esercitazioni verranno svolte presso il laboratorio di zoologia e nei laboratori del CGA.

Testi consigliati

Dispense, diapositive delle lezioni e articoli scientifici in inglese forniti dal docente.

Frequenza

Facoltativa

Metodologia didattica

Ore lezione: 48

Descrizione dei metodi di accertamento

Esame orale, consistente in quesiti relativi ad aspetti teorici e pratici inerenti alle tematiche affrontate. Nella determinazione del voto finale si terrà conto di diversi aspetti: il livello di conoscenza degli argomenti trattati (sufficiente, medio, completo, approfondito); la capacità di collegare tra loro i concetti acquisiti (sufficiente, buona, ottima); la capacità di analisi e di senso critico (sufficiente, buona, ottima), la padronanza di espressione (esposizione carente, semplice, chiara e corretta, sicura e corretta).

Luogo lezioni

Ex Facoltà di Agraria
via San Camillo de Lellis snc
Viterbo

Comunicazioni

Martedì 11.00-13.00
Giovedì 11.00-13.00

Link a materiale didattico

non presente